Effects of complex saline-alkali stress on seed germination and seedling physiological characteristics of Achnatherum inebrians

doi:10.11686/cyxb2020416

Abstract

Abstract:

Saline-alkali land currently has limited options for cultivation and development. This project investigated seed germination， physiological characteristics and antioxidant enzyme activities of Achnatherum inebrians in order to better understand the adaptation to saline soil environments exhibited by this species and provide information to aid future breeding selection and cultivation. A set of 20 different alkali-saline stress conditions were stimulated by mixing two neutral （NaCl and Na₂SO₄） and two alkaline （NaHCO₃ and Na₂CO₃） salts with soil in different proportions （A： NaCl∶Na₂SO₄=1∶1； B： NaCl∶Na₂SO₄∶NaHCO₃=1∶2∶1； C： NaCl∶Na₂SO₄∶NaHCO₃∶Na₂CO₃=1∶9∶9∶1； D： NaCl∶Na₂SO₄∶NaHCO₃∶Na₂CO₃=1∶1∶1∶1； E： NaCl∶Na₂SO₄∶NaHCO₃∶Na₂CO₃= 9∶1∶1∶9） and at concentrations of 50， 100， 150， and 200 mmol·L^-1. These soil mixtures were used to grow seedlings of endophyte-infected （E+） and endophyte-free （E-） drunken horse grass， and analyze the general salt tolerance of drunken horse grass accessions at the germination and seedling growth stages were analyzed. The seed germination rate， germination vigor， germination index， energy index and shoot length， root length， root-shoot ratio， and shoot tissue antioxidant enzymes peroxidase （POD） and superoxide dismutase （SOD）， malondialdehyde （MDA） and proline were evaluated and analyzed data explored by subordinate function analysis. It was found that the germination rate， germination potential， germination index and vigor index of both E+ and E- drunken horse grass were decreased under the five different saline-alkali stresses. Germination was significantly inhibited with increase in saline-alkali stress concentration （P<0.05）. The radicle length and root-shoot ratio were also significantly decreased with increased salt concentration. Except for treatments C and E， physiological indexes （POD， SOD and CAT activities， MDA and proline levels in shoot tissue） of drunken horse grass were reduced at higher salt concentrations. Subordinate function analysis and the multivariate analysis of salt tolerance indicated that the order of salt tolerance across treatments was A>D>B>C>E. In conclusion， saline-alkali stress significantly inhibited seed germination and seedling growth of drunken horse grass （P<0.05）. Among the alkaline salts tested （NaHCO₃ and Na₂CO₃）， Na₂CO₃， especially， had a stronger inhibitory effect on seed germination and growth. Vigor index， root length， POD， SOD， and proline were found to be the most useful indicators to evaluate the salt tolerance of drunken horse grass. The salt tolerance of E+ drunken horse grass was found to be better than that of E-. Epichlo? endophytic fungi can improve the osmotic adjustment and scavenging of reactive oxygen species of drunken horse grass， thus reducing the membrane lipid peroxidation， and improving the salt tolerance of A. inebrians.

Key words: mixed saline-alkali stress, drunken horse grass, endophytic fungi, physiological property, salt tolerance

Ya-qi CHEN, Kai-qi SU, Tai-xiang CHEN, Chun-jie LI. Effects of complex saline-alkali stress on seed germination and seedling physiological characteristics of Achnatherum inebrians[J]. Acta Prataculturae Sinica, 2021, 30(3): 137-157.

Figures/Tables 21

References 56

1	Ji Y J. Research progress on Achnatherum inebrians. Journal of Anhui Agricultural Science， 2009， 37（5）： 2154-2156， 2169.
	纪亚君. 醉马草芨芨草的研究进展. 安徽农业科学， 2009， 37（5）： 2154-2156， 2169.
2	Bruehl G W， Kaiser W J， Klein R E. An endophyte of Achnatherum inebrians， an intoxication grass of Northwest China. Mycology， 1994， 86（6）： 773-776.
3	Nan Z B， Li C J. Roles of the grass-Neotyphodium association in pastoral agriculture systems. Acta Ecological Sinica， 2004（3）： 605-616.
	南志标，李春杰. 禾草-内生真菌共生体在草地农业系统中的作用. 生态学报， 2004（3）： 605-616.
4	Chen N. Genetic diversity of drunken horse grass （Achnatherum inebrians） and effects of its endophyte infection on cold tolerance. Lanzhou： Lanzhou University， 2008.
	陈娜. 醉马草遗传多样性及内生真菌对其抗寒性影响. 兰州：兰州大学， 2008.
5	Xia C. Responses of Epichloë gansuensis-Achnatherum inebrians symbiont to drought stress. Lanzhou： Lanzhou University， 2018.
	夏超. 醉马草—内生真菌共生体对干旱胁迫的响应. 兰州：兰州大学， 2018.
6	Guo C H， Li X Z， Liu L， et al. Effect of the Epichloë endophyte on the soil nematode community in the rhizosphere of Achnatherum inebrians. Acta Prataculturae Sinica， 2016， 25（4）： 140-148.
	郭长辉，李秀璋，柳莉，等. 内生真菌对醉马草根际土壤线虫群落的影响.草业学报， 2016， 25（4）： 140-148.
7	Liu L， Guo C H， Lv H， et al. Effect of the Epichloë gansuensis endophyte on the disease resistance of drunken horse grass to powdery mildew. Acta Prataculturae Sinica， 2015， 24（11）： 65-71.
	柳莉，郭长辉，吕卉，等.内生真菌对醉马草白粉病抗性的影响. 草业学报， 2015， 24（11）： 65-71.
8	Gou X Y. Effects of Neotyphodium endophyte on salt tolerance to drunken horse grass （Achnatherum inebrians）. Lanzhou： Lanzhou University， 2007.
	缑小媛. 内生真菌对醉马草耐盐性的影响研究. 兰州：兰州大学， 2007.
9	Duan C H， Yu X J， Xu C L， et al. The effect of light and salinity on Achnatherum inebrians seed germination. Seed， 2012， 31（4）： 7-9， 14.
	段春华，鱼小军，徐长林，等. 光照和盐分对醉马草种子萌发的影响. 种子， 2012， 31（4）： 7-9， 14.
10	Li C J， Nan Z B， Zhang C J， et al. Effects of drunken horse grass infected with endophyte on Chinese rabbit. Journal of Agricultural Science and Technology， 2009， 11（2）： 84-90.
	李春杰，南志标，张昌吉，等. 醉马草内生真菌对家兔的影响. 中国农业科技导报， 2009， 11（2）： 84-90.
11	Liang Y. Effect of Achnatherum inebrians/Neotyphodium endophyte symbiont on small tailed han sheep. Lanzhou： Lanzhou University， 2011.
	梁莹. 醉马草内生真菌共生体对小尾寒羊的影响. 兰州：兰州大学， 2011.
12	Li C J， Yao X， Nan Z B. Advances in research of Achnatherum inebrians-Epichloë endophyte symbionts. Chinese Journal of Plant Ecology， 2018， 42（8）： 793-805.
	李春杰，姚祥，南志标. 醉马草内生真菌共生体研究进展. 植物生态学报， 2018， 42（8）： 793-805.
13	Chang Q R， Wang L X， Li X P. Soil nutrition barriers in the southern area of Ningxia. Agricultural Research in the Arid Areas， 1997（2）： 66-71.
	常庆瑞，王立祥，李新平. 宁南地区土壤营养障碍性分析. 干旱地区农业研究， 1997（2）： 66-71.
14	Yu Z Y， Liang S M. Analysis of irrigation water using efficiency in arid and semi-arid areas in Northwest China based on Miami model. Journal of Arid Land Research and Environment， 2017， 31（9）： 49-55.
	于智媛，梁书民. 基于Miami模型的西北干旱半干旱地区灌溉用水效果评价——以甘宁蒙为例.干旱区资源与环境， 2017， 31（9）： 49-55.
15	Ma C M， Jin M G. Problems in exploitation of the salinization land in the Northwest China and the concerned prevention and cure countermeasures. Journal of China Hydrology， 2007（1）： 78-81.
	马传明，靳孟贵. 西北地区盐渍化土地开发中存在问题及防治对策. 水文， 2007（1）： 78-81.
16	Ji S M. Study on the salt tolerance of turfgrass Ⅱ. Effect of salt stress on the content of proline of turfgrass. Pratacultural Science， 1999（Supple 1）： 3-5.
	纪淑梅. 草坪草耐盐性研究 Ⅱ.盐胁迫对草坪草脯氨酸含量的影响. 草业科学， 1999（增刊1）： 3-5.
17	Wang H L， Abulaiti Abudureyimu， Qi M. Distribution of K⁺ and Na⁺ in bermudagrass under Na₂SO₄ stress and evaluation of salt resistance. Chinese Journal of Grassland， 2004（5）： 38-43.
	王红玲，阿不来提·阿不都热依木，齐曼. Na₂SO₄胁迫下狗牙根K⁺、Na⁺离子分布及其抗盐性的评价.中国草地， 2004（5）： 38-43.
18	Song Y L， Chen J Y， Wang K Q， et al. Effects of short-term Na₂CO₃stress on growth and physiological characteristics of three cool season turfgrasses. Grassland and Turf， 2019， 39（5）： 10-19.
	宋娅丽，陈佳钰，王克勤，等. Na₂CO₃短期胁迫对3种冷季型草坪草幼苗生长及生理特性的影响.草原与草坪， 2019， 39（5）： 10-19.
19	Han D H， Zhang Y， Jin L. Effects of basic salt and mixed salt-alkali stress tolerance on seed germination and seeding physiological characteristic of Astraglus membranaceus var. Mongholicus. Chinese Traditional and Herbal Drugs， 2013，43（12）： 1661-1666.
20	Yang J S. Development and prospect of the research on salt-affected soils in China. Acta Pedologica Sinica， 2008， 45（5）： 837-845.
	杨劲松. 中国盐渍土研究的发展历程与展望. 土壤学报， 2008， 45（5）： 837-845.
21	Shi D C， Yin L J. Difference between salt （NaCl） and alkaline （Na₂CO₃） stresses on Puccinellia tenuiflora （Griseb.） Scribn. et Merr. plants. Acta Botanica Sinica， 1993（3）： 144-149.
22	Yang C W， Chong J N， Li C Y， et al. Osmotic adjustment and ion balance traits of an alkali resistant halophyte Kochia sieversiana during adaptation to salt and alkali conditions. Plant and Soil， 2007， 294： 263-276.
23	Shi D C， Zhao K F. Effects of NaCl and Na₂CO₃ on growth of Puccinellia tenuiflora and on present state of mineral elements in nutrient solution. Acta Prataculturae Sinica， 1997， 6： 51-61.
24	Song J， Feng G， Tian C Y， et al. Strategies for adaptation of Suaeda physophora， Haloxylon ammodendron and Haloxylon persicum to a saline environment during seed germination stage. Annals of Botany， 2005， 96（1）： 399-405.
25	Song J， Feng G， Zhang F S. Salinity and temperature effects on germination for three salt-resistant euhalophytes， Halostachys caspica， Kalidium foliatum and Halocnemum strobilaceum. Plant and Soil， 2006， 279（1/2）： 201-207.
26	Li C J， Nan Z B， Liu Y， et al. Methodology of endophyte detection of drunken horse grass （Achnatherum inebrians）//Professional Committee of Plant Pathogenic Fungi of Chinese Society of Plant Pathology， Professional Committee of Plant Pathogenic Fungi of Chinese Society of Fungi， Southwest District Office of Chinese Society of Plant Pathology，et al. Proceedings of the Hangzhou Joint Annual Meeting of the Chinese Society of Phytophthora Infestans and Mycelia. Hangzhou： Chinese Society of Plant Pathology， 2008： 21-24.
	李春杰，南志标，刘勇，等. 醉马草内生真菌检测方法的研究//中国植物病理学会植物病原真菌专业委员会，中国菌物学会植物病原真菌专业委员会，中国植物病理学会西南区代表处，等. 中国植病、菌物学会杭州联合年会论文集. 杭州：中国植物病理学会， 2008： 21-24.
27	Li N N， Zhao Y F， Xia C， et al. Effects of thiophanate methyl on seed borne Epichloё fungal endophyte of Achnatherum inebrians. Pratacultural Science， 2016， 33（7）： 1306-1314.
	李娜娜，赵玉凤，夏超，等. 甲基托布津对醉马草种带内生真菌的灭菌活性. 草业科学， 2016， 337： 1306-1314.
28	Wang L， Gan H， Yu F L， et al. Salted soil and its development in Northwest China. Journal of Hydraulic Engineering， 2001（6）： 90-95.
	汪林，甘泓，于福亮，等. 西北地区盐渍土及其开发利用中存在问题的对策. 水利学报， 2000（6）： 90-95.
29	Zhao Y， Wei X H， He Y L， et al. Effects of complex saline-alkali stress on seed germination and seedling antioxidant characteristics of Chenopodium quinoa. Acta Prataculturae Sinica， 2019， 28（2）： 156-167.
	赵颖，魏小红，赫亚龙，等. 混合盐碱胁迫对藜麦种子萌发和幼苗抗氧化特性的影响. 草业学报， 2019， 28（2）： 156-167.
30	Yuan C X， Ding J. Effects of water stress on the content of IAA and the activities of IAA oxidase and peroxidase in cotton leaves. Acta Physiologica Sinica， 1990（2）： 184-197.
	袁朝兴，丁静. 水分胁迫对棉花叶片中IAA从含量、IAA氧化酶和过氧化物酶活性的影响. 植物生理学报， 1990（2）： 184-197.
31	Li H S. Principles and techniques of plant physiology and biochemistry experiment. Beijing： Higher Education Press， 2000： 260-261.
	李合生. 植物生理生化实验原理和技术. 北京：高等教育出版社， 2000： 260-261.
32	Chen J X，Wang X F. Guide of plant physiological experiments. Guangzhou： South China University of Technology Press， 2006.
	陈建勋，王晓峰. 植物生理学实验指导.广州：华南理工大学出版社， 2006.
33	Zhang Z L. Experimental guidance on plant physiology. Beijing： Higher Education Press， 2003.
	张志良. 植物生理学试验指导. 北京：高等教育出版社， 2003.
34	Li Z， Yun L， Shi Z Y， et al. physiological characteristics of Psathyrostachys juncea at seed germination and seedling growth stages under salt stress. Acta Prataculturae Sinica， 2019， 28（8）： 119-129.
	李珍，云岚，石子英，等. 盐胁迫对新麦草种子萌发及幼苗期生理特性的影响. 草业学报， 2019， 28（8）： 119-129.
35	Du L X， Dong K H， Xia F S， et al. Effect of salt stress on germination and physiological characteristics of Russian wild ryegrass seed. Acta Agrestia Sinica， 2009， 17（6）： 789-794.
	杜利霞，董宽虎，夏方山，等. 盐胁迫对新麦草种子萌发特征与生理特征的影响. 草地学报， 2009， 17（6）： 789-794.
36	Wijewardana C， Alsajri F， Reddy K. Soybean seed germination response to in vitro osmotic stress. Seed Technology， 2009， 39： 143-154.
37	Xie Z Y， Yang G S. Advances in salt tolerance of forage plants. Pratacultural Science， 2003（8）： 11-17.
	谢振宇，杨光穗. 牧草耐盐性研究进展. 草业科学， 2003（8）： 11-17.
38	Sun J Y， Cheng Q， Li S M. Effect of salt stress on seed germination and seedling growth of wheat. Molecular Plant Breeding， 2017， 15（6）： 2348-2352.
	孙君艳，程琴，李淑梅. 盐胁迫对小麦种子萌发及幼苗生长的影响. 分子植物育种， 2017， 15（6）： 2348-2352.
39	Zhang H Y， Ji X H， Li H J， et al. Effects of neutral salt and alkaline salt stresses on chili peppers （Capsicum annuum） germination. Molecular Plant Breeding， 2020，18（2）： 544-552.
	张海英，吉雪花，李慧姬，等. 中性盐胁迫和碱性盐胁迫对制干辣椒（Capsicum annuum）种子萌发的影响. 分子植物育种， 2020， 18（2）： 544-552.
40	Zhang W H， Liu Y L， Xia C P. Effects of salinity on activity of two enzymes in barley and wheat during emergence. Journal of Nanjing Agricultural University， 1991， 14（4）： 18-22.
	章文华，刘友良，夏长沛. 盐胁迫对大、小麦种子萌发时两种酶活性的影响. 南京农业大学学报， 1991， 14（4）： 18-22.
41	Li R L， Shi F C， Fukuda K J. Interactive effects of salt and alkali stresses on seed germination， germination recovery， and seedling growth of a halophyte Spartina alterniflora （Poaceae）. South African Journal of Botany， 2010， 76（2）： 380-387.
42	Hernandez J A， Olmos E， Corpas F J. Salt-induced oxidative stress in chloroplasts of pea plants. Plant Science， 1995， 105（2）： 151-167.
43	Gao K， Gao Y， Zhu T X， et al. Effect of saline-alkali stress on tuber germination and seedling growth of Helianthus tuberosus. Pratacultural Science， 2018， 35（12）： 2915-2923.
	高凯，高阳，朱铁霞，等. 盐碱胁迫对菊芋块茎萌发及幼苗生长的影响. 草业科学， 2018， 35（12）： 2915-2923.
44	Qu Y G， Zhao K F. Comparative studies on growth and physiological reaction of Zea mays under NaCl and Na₂CO₃stresses. Acta Agronomica Sinica， 2004（4）： 334-341.
	曲元刚，赵可夫. NaCl和Na₂CO₃对玉米生长和生理胁迫效应的比较研究. 作物学报， 2004（4）： 334-341.
45	Wu W， Gao H D， Cai W J. Effects of alkali-saline stress and NO treatment on root activity of Salixhybrid. Journal of Nanjing Forestry University （Natural Sciences Edition）， 2008， 32（4）： 59-62.
	吴薇，高捍东，蔡伟建. 盐碱胁迫和NO处理对杂交新美柳根系活力的影响. 南京林业大学学报（自然科学版）， 2008， 32（4）： 59-62.
46	Zhang L X， Chang Q S， Hou X G， et al. Effects of sodium salt stress on seed germination of Prunella vulgaris. Pratacultural Science， 2015， 24（3）： 177-186.
	张利霞，常青山，侯小改，等.不同钠盐胁迫对夏枯草种子萌发特性的影响. 草业科学， 2015， 24（3）： 177-186.
47	Yildiztugay E， Sekmen A H， Turkan I， et al. Elucidation of physiological and biochemical mechanisms of an endemic halophyte Centaurea tuzgoluensis under salt stress. Plant Physiology Biochemistry， 2011， 49： 816-824.
48	Malencic D， Kiprovski B， Popovic M， et al. Changes in antioxidant systems in soybean as affected by Sclerotinia sclerotiorum （Lib） de Bary. Plant Physiology Biochemistry， 2010， 48： 903-908.
49	Wang Q， Wu C， Xie B， et al. Model analysing the antioxidant responses of leaves and roots of switchgrass to NaCl-salinity stress. Plant Physiology and Biochemistry， 2012， 58： 288-296.
50	Chandra A， Dubey A. Effect of ploidy levels on the activities of Delta（1）-pyrroline-5-carboxylate synthetase， superoxide dismutase and peroxidase in Cenchrus species grown under water stress. Plant Physiology Biochemistry， 2010， 48： 27-34.
51	Srivastava A K， Srivastava S， Penna S， et al. Thiourea orchestrates regulation of redox state and antioxidant responses to reduce the NaCl-induced oxidative damage in Indian mustard （Brassica juncea （L.） Czern.）. Plant Physiology Biochemistry， 2011， 49（6）： 676-686.
52	Liu H B， Wei Y Q， Zhou W S， et al. Effects of NaCl stress on physiological and biochemical characteristics of sweet Sorghum and Spring wheat at germination stage. Jiangsu Agricultural Sciences， 2016， 44（8）： 106-111.
	刘海波，魏玉清，周维松，等. NaCl胁迫对萌发期甜高粱和春小麦生理生化特征的影响. 江苏农业科学， 2016， 44（8）： 106-111.
53	Larson R A. The antioxidants of higher plants. Phytochemistry， 1988， 27（4）： 969-978.
54	Wang Z F， Li C J， White J. Effect of the Epichloë endophyte infection on growth， physiological properties and seed germination of wild barley under saline conditions. Journal of Agronomy and Crop Science， 2020， 206： 43-51.
55	Ashraf M， Foolad M R. Roles of glycine betaine and proline in improving plant abiotic stress resistance. Environmental and Experimental Botany， 2007， 59： 206-216.
56	Hayat S， Hayat Q， Alyemen M N， et al. Role of proline under changing environments： A review. Plant Signaling & Behavior， 2012， 7（11）： 1456-1466.

处理 Treatments	盐碱组分及摩尔比例Salt composition and molar ratio				pH
处理 Treatments	NaCl	Na₂SO₄	NaHCO₃	Na₂CO₃	50 mmol·L^-1	100 mmol·L^-1	150 mmol·L^-1	200 mmol·L^-1
CK	0	0	0	0	7.0	7.0	7.0	7.0
A	1	1	0	0	7.2	7.3	7.6	7.6
B	1	2	1	0	8.7	8.7	8.9	9.0
C	1	9	9	1	9.0	9.1	9.1	9.2
D	1	1	1	1	9.6	9.6	9.6	9.8
E	9	1	1	9	10.3	10.4	10.4	10.5

处理 Treatments	盐碱组分及摩尔比例Salt composition and molar ratio				pH
处理 Treatments	NaCl	Na₂SO₄	NaHCO₃	Na₂CO₃	50 mmol·L^-1	100 mmol·L^-1	150 mmol·L^-1	200 mmol·L^-1
CK	0	0	0	0	7.0	7.0	7.0	7.0
A	1	1	0	0	7.2	7.3	7.6	7.6
B	1	2	1	0	8.7	8.7	8.9	9.0
C	1	9	9	1	9.0	9.1	9.1	9.2
D	1	1	1	1	9.6	9.6	9.6	9.8
E	9	1	1	9	10.3	10.4	10.4	10.5

混合盐碱处理 Saline-alkali treatment	浓度 Concentration of saline-alkali (mmol·L^-1）	发芽率 Germination rate （%）		发芽势 Germination energy
混合盐碱处理 Saline-alkali treatment	浓度 Concentration of saline-alkali (mmol·L^-1）	E+	E-	E+	E-
CK	0	0.75±0.05abcde	0.87±0.03a	0.62±0.10ab	0.75±0.00a
A	50	0.82±0.03ab	0.77±0.03abcd	0.72±0.10a	0.67±0.10ab
	100	0.63±0.14defg	0.68±0.08bcdef	0.45±0.00cde	0.65±0.10ab
	150	0.62±0.03efg	0.35±0.23ijk	0.32±0.03efg	0.30±0.20efgh
	200	0.38±0.03hij	0.35±0.00ijk	0.27±0.03fghi	0.25±0.09fghij
B	50	0.78±0.03abc	0.75±0.05abcde	0.52±0.06bcd	0.65±0.05ab
	100	0.37±0.08ijk	0.35±0.10ijk	0.22±0.15ghijk	0.32±0.10defg
	150	0.18±0.15lmn	0.23±0.15klm	0.17±0.13ghijkl	0.20±0.13ghijk
	200	0.08±0.06nop	0.18±0.06lmn	0.08±0.06klm	0.18±0.06ghijkl
C	50	0.67±0.03cdef	0.47±0.06ghi	0.55±0.10bc	0.45±0.09cde
	100	0.17±0.03lmn	0.33±0.03ijk	0.15±0.05hijklm	0.27±0.03fghi
	150	0.13±0.03lmnop	0.15±0.05lmno	0.10±0.05jklm	0.15±0.05hijklm
	200	0.05±0.09nop	0.05±0.05nop	0.05±0.09lm	0.03±0.06lm
D	50	0.60±0.05fg	0.42±0.03hi	0.57±0.06bc	0.43±0.03cde
	100	0.52±0.10gh	0.38±0.06hij	0.45±0.05cde	0.30±0.09efgh
	150	0.42±0.10hi	0.27±0.06jkl	0.38±0.08def	0.27±0.06fghi
	200	0.10±0.00mnop	0.02±0.03op	0.10±0.00jklm	0.07±0.12klm
E	50	0.25±0.05jkl	0.13±0.08lmnop	0.18±0.08ghijkl	0.13±0.08ijklm
	100	0.07±0.03nop	0.07±0.08nop	0.07±0.03klm	0.07±0.08klm
	150	0.07±0.08nop	0.07±0.08nop	0.07±0.08klm	0.07±0.08klm
	200	0.00±0.00p	0.00±0.00p	0.00±0.00m	0.00±0.00m

混合盐碱处理 Saline-alkali treatment	浓度 Concentration of saline-alkali (mmol·L^-1）	发芽率 Germination rate （%）		发芽势 Germination energy
混合盐碱处理 Saline-alkali treatment	浓度 Concentration of saline-alkali (mmol·L^-1）	E+	E-	E+	E-
CK	0	0.75±0.05abcde	0.87±0.03a	0.62±0.10ab	0.75±0.00a
A	50	0.82±0.03ab	0.77±0.03abcd	0.72±0.10a	0.67±0.10ab
	100	0.63±0.14defg	0.68±0.08bcdef	0.45±0.00cde	0.65±0.10ab
	150	0.62±0.03efg	0.35±0.23ijk	0.32±0.03efg	0.30±0.20efgh
	200	0.38±0.03hij	0.35±0.00ijk	0.27±0.03fghi	0.25±0.09fghij
B	50	0.78±0.03abc	0.75±0.05abcde	0.52±0.06bcd	0.65±0.05ab
	100	0.37±0.08ijk	0.35±0.10ijk	0.22±0.15ghijk	0.32±0.10defg
	150	0.18±0.15lmn	0.23±0.15klm	0.17±0.13ghijkl	0.20±0.13ghijk
	200	0.08±0.06nop	0.18±0.06lmn	0.08±0.06klm	0.18±0.06ghijkl
C	50	0.67±0.03cdef	0.47±0.06ghi	0.55±0.10bc	0.45±0.09cde
	100	0.17±0.03lmn	0.33±0.03ijk	0.15±0.05hijklm	0.27±0.03fghi
	150	0.13±0.03lmnop	0.15±0.05lmno	0.10±0.05jklm	0.15±0.05hijklm
	200	0.05±0.09nop	0.05±0.05nop	0.05±0.09lm	0.03±0.06lm
D	50	0.60±0.05fg	0.42±0.03hi	0.57±0.06bc	0.43±0.03cde
	100	0.52±0.10gh	0.38±0.06hij	0.45±0.05cde	0.30±0.09efgh
	150	0.42±0.10hi	0.27±0.06jkl	0.38±0.08def	0.27±0.06fghi
	200	0.10±0.00mnop	0.02±0.03op	0.10±0.00jklm	0.07±0.12klm
E	50	0.25±0.05jkl	0.13±0.08lmnop	0.18±0.08ghijkl	0.13±0.08ijklm
	100	0.07±0.03nop	0.07±0.08nop	0.07±0.03klm	0.07±0.08klm
	150	0.07±0.08nop	0.07±0.08nop	0.07±0.08klm	0.07±0.08klm
	200	0.00±0.00p	0.00±0.00p	0.00±0.00m	0.00±0.00m

混合盐碱处理Saline-alkali treatment	浓度 Concentration of saline-alkali (mmol·L^-1）	发芽指数 Germination index		活力指数 Vigor index
混合盐碱处理Saline-alkali treatment	浓度 Concentration of saline-alkali (mmol·L^-1）	E+	E-	E+	E-
CK	0	6.84±0.36bc	7.46±0.24bc	30.56±1.82bc	24.91±5.09cd
A	50	10.23±1.08a	10.85±0.51a	38.67±6.80a	36.80±0.79ab
	100	4.93±1.00d	7.62±0.43bc	25.08±4.91cd	33.77±4.42ab
	150	3.92±0.14defg	2.82±1.22fghij	18.15±2.86ef	8.58±3.51ghij
	200	2.13±0.25hijklmn	2.28±0.59hijklm	6.51±0.63hijkl	7.23±2.01ghijk
B	50	6.93±1.72bc	8.23±0.30b	35.26±13.81ab	32.92±2.13ab
	100	2.91±1.09fghij	3.32±0.90efghi	9.91±3.84gh	8.75±3.33fghi
	150	2.00±1.46hijklmn	2.35±1.79ghijkl	4.79±3.60hijkl	5.18±4.30hijkl
	200	0.61±0.35mnop	0.99±0.19mnop	1.22±0.69kl	1.65±0.38jkl
C	50	6.38±0.89c	6.59±2.47c	25.92±5.30cd	5.89±0.28hijkl
	100	1.39±0.22jklmnop	2.09±0.80hijklmn	4.37±0.40hijkl	4.92±2.32hijkl
	150	1.10±0.36klmnop	1.31±0.54jklmnop	2.54±0.84ijkl	2.20±1.60ijkl
	200	0.31±0.53op	0.23±0.31op	0.34±0.58kl	0.31±0.44kl
D	50	4.54±1.20de	3.43±0.36defgh	13.31±3.80fg	22.36±8.08de
	100	4.36±0.79def	2.95±0.48fghij	10.23±2.35gh	5.37±0.28hijkl
	150	2.66±0.71ghijk	2.26±0.64hijklm	3.97±1.39hijkl	2.78±0.95ijkl
	200	0.80±0.17lmnop	0.61±1.10mnop	0.72±0.27kl	0.61±1.06kl
E	50	1.74±0.38ijklmn	1.53±0.65jklmnop	3.60±0.84hijkl	1.43±0.83kl
	100	0.47±0.13nop	0.67±0.76mnop	0.42±0.09kl	0.55±0.69kl
	150	0.46±0.62nop	0.58±0.80nop	0.53±0.79kl	0.44±0.64kl
	200	0.00±0.00p	0.00±0.00p	0.00±0.00l	0.00±0.00l